Biometria corporal e avaliação macroscópica de órgãos de carcarás (Caracara plancus, Miller, 1777) de vida livre, capturados na região metropolitana de Fortaleza, Ceará

Autores

  • Samuel Salgado Tavares Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
  • Mariana Andrioli Pinheiro Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
  • Isaac Mourão Xavier Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
  • Matheus Silva Feitosa Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
  • Pedro Ernesto de Araujo Cunha Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
  • Lidia Sampaio Batista Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
  • Ligia Santos Oliveira Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
  • Rodrigo Fonseca de Medeiros Guedes Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
  • Belarmino Eugênio Lopes Neto Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
  • Glauco Jonas Lemos Santos Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
  • Marcio Gomes Alencar Araripe Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
  • Diana Célia Sousa Nunes-Pinheiro Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil

DOI:

https://doi.org/10.5935/rbhsa.v8i2.173

Palavras-chave:

ave de rapina, Caracara plancus, parâmetros fisiológicos, avaliação macroscópica.

Resumo

Objetivou-se avaliar  a biometria corporal e os aspectos macroscópicos de órgãos de carcarás (Caracara plancus). Foram capturados 10 exemplares de carcarás, machos, adultos, provenientes da área do aeroporto Internacional Pinto Martins, Fortaleza, com aprovação do SISBIO/ICMBio (n. 38438-1). Os animais foram pesados vivos, contidos, anestesiados (Xilazina, 1 mg/kg/PV e Quetamina 20 mg/kg/PV) por via intramuscular e eutanaziados com cloreto de potássio (CFMV, 2012) por via endovenosa (0,5 mL por animal). As aves foram pesadas (g) e medidos (mm) o cúlmen, cabeça, metatarso, asa, cauda, total do corpo. Coração, Baço, Estômago, Fígado, Intestino e Pâncreas foram removidos e analisados macroscopicamente e pesados (g) para determinação dos pesos absoluto e relativo. Os intestinos pesados (g) e esvaziados e procedeu-se a determinação do comprimento com uma fita métrica. As mucosas intestinais foram analisadas macroscopicamente quanto aos parâmetros inflamatórios. Os dados foram expressos em valores mínimo e máximo e média e desvio padrão. O peso médio foi de 926,6g ± 71,7g enquanto ss pesos relativos médios dos órgãos foram: coração = 1,07%, baço = 0,06%, estômago = 1,58%, fígado = 1,54% e pâncreas = 0,11% , intestino = 1,98%. Os órgãos apresentaram textura, coloração e consistência adequadas, e não foram observadas alterações dignas de nota. A mucosa intestinal apresentou-se com uma coloração homogênea rosada para o avermelhado, lisa, livre de pontos hemorrágicos e lesões macroscópicas. Espera-se que estes dados possam contribuir para o conhecimento da biologia e fisiologia desta ave e auxiliar em estados patológicos.

Palavras chaves: ave de rapina, Caracara plancus; parâmetros fisiológicos; avaliação macroscópica.

Biografia do Autor

  • Samuel Salgado Tavares, Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
    Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinária (PPGCV), Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
  • Mariana Andrioli Pinheiro, Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
    Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinária (PPGCV), Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
  • Isaac Mourão Xavier, Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
    Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinária (PPGCV), Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
  • Matheus Silva Feitosa, Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
    Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinária (PPGCV), Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
  • Pedro Ernesto de Araujo Cunha, Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
    Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinária (PPGCV), Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
  • Lidia Sampaio Batista, Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
    Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinária (PPGCV), Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
  • Ligia Santos Oliveira, Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
    Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinária (PPGCV), Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
  • Rodrigo Fonseca de Medeiros Guedes, Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
    Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinária (PPGCV), Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
  • Belarmino Eugênio Lopes Neto, Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
    Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinária (PPGCV), Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
  • Glauco Jonas Lemos Santos, Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
    Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinária (PPGCV), Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
  • Marcio Gomes Alencar Araripe, Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
    Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinária (PPGCV), Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;
  • Diana Célia Sousa Nunes-Pinheiro, Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil
    Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinária (PPGCV), Universidade Estadual do Ceará (UECE), Fortaleza, CE, Brasil;

Referências

CONSELHO FEDERAL DE MEDICINA VETERINÁRIA. Procedimentos e métodos de eutanásia em animais e dá outras providências. Resolução n. 1000, de 11 de Maio de 2012.

CHO, J. H.; KIM, H. J.; KIM, I. H. Effects of phytogenic feed additive on growth performance, digestibility, blood metabolites, intestinal microbiota, meat color and relative organ weight after oral challenge with Clostridium perfringens in broilers. Livestock Science, v.160, p.82 - 88, 2014.

DENBOW D. M. Gastrointestinal anatomy and physiology. In: WHITTOW G. C. (ed). Sturkie’s avian physiology. 5th edition. San Diego (CA): Academic Press; 2000. p.299 - 325.

DUKE G. E. Alimentary canal: anatomy, regulation of feeding, and motility. In: STURKIE P. D. (ed). Avian physiology. 4th edition. New York: Springer-Verlag; 1986. p.269 - 88.

DUKE G. E. Gastrointestinal physiology and nutrition in wild birds. Proceedings of the Nutrition Society. p.1049 -105, 1997.

FERGUSON-LEES, J.; CHRISTIE, D. A.; FRANKLIN, K.; MEAD, D.; BURTON, P. Measuring lengths and wingspans of raptors. In: Raptors of the World. Great Britain: A & C Black Ltd., 2001. p.31 - 14.

KING A. S.; MCLELLAND J. Digestive system. In: Birds: their structure and function. 2nd edition. London: Bailliere Tindall; 1984a. p.84 - 109.

KING A. S.; MCLELLAND J. Cardiovascular system. In: Birds: their structure and function. 2nd edition. London: Bailliere Tindall; 1984b. p.214 - 28.

KLASING K. Comparative Avian Nutrition. New York, NY, CABI Publishing, 1998.

KLINGEL, H. Social organisation and behaviour of the Grevy’s zebra. Zeitschrift Fur Tierpsychologie, v.36, p.36 - 70, 1974.

KÜHL H. S.; BURGHARDT, T. Animal biometrics: quantifying and detecting phenotypic appearance. Trends in Ecology & Evolution, v.28, n.7, p.432 – 441, 2013

LIERZ, M. Diagnostic value of endoscopy and biopsy. In: Clinical Avian Medicine. HARRISON, GJ, LIGHTFOOT TL (eds). Spix Publishing, Palm Beach, Florida, v.1, p.631 - 652, 2006.

MCLELLAND J. Digestive system. In: KING A. S.; MCLELLAND J. (eds). Form and function in birds. v. 1. London: Academic Press; 1979. p.69 - 181.

OSO, A. O.; WILLIAMS, G. A.; JEGEDE, A. V.; SOBAYO, R. A.; IDOWU, O. M. O.; FAFIOLU, A. O.; SOGUNLE, O. M.; AKINOLA, O. S.; ADELEYE, O. O.; OLORUNSOLA, I. A. R.; OGUNADE, I. M.; OSHO, S. O.; OBADIRE, F. O., BAMGBOSE, A. M. Effect of combination of whole millet feeding and mannan oligossaccharides supplementation on growth performance, serum biochemistry and relative organ weights of growing guinea fowl (Numidia meleagris). Livestock Science, v.159, p.46 - 52, 2014.

QI, M.; LU, Y.; DU, N.; ZHANG, Y.; WANG, C.; KONG, J. A novel image hiding approach based on correlation analysis for secure multimodal biometrics. Journal of Network and Computer Applications, v.33, p.247 - 257, 2010.

RAE, M. A. Practical avian necropsy. Seminars in Avian and Exotic Pet Medicine, v.12, n.2, p.62 - 70, 2003.

SCOTT, D. K. Identification of individual Bewick’s swans by bill patterns. In: STONEHOUSE, B. (ed). Animal Marking: Recognition Marking of Animals in Research. MacMillan, p.160–168, 1978.

SIGRIST, T. Guia de campo avis brasilis avifauna brasileira: descrição das espécies. v. 2. São Paulo: Avisbrasilis, 2009.

TJORVE, K. M. C.; TJORVE E. Shapes and functions of bird-growth models: how to characterise chick postnatal growth. Zoology, v.113, p.326 - 333, 2010.

ZHANG, Z. F.; ZHOU, T. X.; AO, X.; KIM, I. H. Effects of b-glucan and Bacillus subtilis on growth performance, blood profiles, relative organ weight and meat quality in broilers fed maize–soybean meal based diets. Livestock Science. v.150, p.419 - 424, 2012.

Downloads

Publicado

2014-06-24

Edição

Seção

Artigos